1. 研究目的与意义、国内外研究现状(文献综述)
1.本课题的意义、国内外研究概况、应用前景等(列出主要参考文献)
1.1 本课题的意义
番茄(s. lycopersicon),又称西红柿、番柿,属茄科(solanaceae)番茄属植物。原产于南美洲热带地区,富含维生素c、胡萝卜素、矿物质等多种营养,果实可作蔬菜或水果,深受群众欢迎。其栽培面积较大,已成为我国主要的蔬菜种类之一。
2. 研究的基本内容和问题
2.研究的目标、内容和拟解决的关键问题
2.1 研究目标
①以不同来源的番茄品种为试材,筛选出番茄苗期较好的耐低温鉴定指标,为番茄耐低温材料筛选提供准确的测定方法。
3. 研究的方法与方案
3.研究方法、技术路线、实验方案及可行性分析
3.1 研究方法
本研究采用室内实验观察、理化分析测定,配合数理统计分析方法进行,主要采用蒽酮比色法分析,考马斯亮蓝法,愈创木酚法,NBT法,TBA法,碘化钾分光光度法等。通过耐低温性分组,利用相关性分析、主成分分析,聚类分析及隶属函数法分析等方法对各鉴定指标进行筛选,从而确定较好的耐低温鉴定指标。
3.2 技术路线
本研究的技术路线见下图:见附件
番茄品种资源(10份材料) |
正常条件培养 |
幼苗期:25℃/15℃(d/n)进行预处理2d,从第3d开始4℃/4℃(d/n)分别处理1d,3d,5d,7d。 |
测定冷害指数,CAT酶活性,SOD酶活性,POD酶活性,电导率,MDA含量,可溶性糖含量,可溶性蛋白含量,O2-产生速率、过氧化氢(H2O2)含量,叶绿素含量,自由水和束缚水含量。 |
相关性分析、主成分分析、聚类分析、隶属函数法分析 |
确定苗期耐低温鉴定指标 |
对引进的番茄材料的耐低温能力进行鉴定,并对筛选出的耐低温指标进行进一步验证 |
3.3 实验方案
3.3.1 番茄苗期耐低温鉴定指标的筛选
1、将番茄品种资源(10份材料)种子在正常条件下培养,当进入幼苗期长到6-7片真叶时,每个品种选取12株长势一致的幼苗,移到光照培养箱内进行2d预处理,即前2d内白天25℃(14h),夜间15℃(10h),光照度4000lx,从第3d开始白天4℃,夜间4℃,光照度4000lx(光照时数同预处理),分别处理1d,3d,5d,7d,然后取相同部位的叶片测定各项理化指标。以低温处理第0d的为对照,4℃为低温处理,重复3次。
2、冷害的分级和冷害指数的计算:0级:叶片正常,未受冷害;1 级:仅少数叶片边缘有轻度的皱缩萎蔫;2级:近半数叶片萎蔫死亡,但主茎未死,恢复常温后能长出新叶;3级:半数以上的叶片萎蔫死亡;4级:植株全部死亡。每个株系设3次重复。公式如下:冷害指数=Σxa /(nΣx)=(x1a1 x2a2 xnan)/ nT,其中,x1、x2、x3xn 表示各级冷害的番茄株数,a1、a2、a3an 表示各冷害级数,T为调查的总株数[17]。
3、测定不同温度处理下番茄植株中各种酶活性,酶种类包括SOD、POD、CAT。
SOD活性测定:采用氮蓝四唑(NBT)光化还原法[18],1个酶活力单位定义为抑制氮蓝四唑(NBT)光化还原50%所需要的酶量。3mL反应混合液中含有:1.3μM核黄素;13mM甲硫氨酸;63μMNBT;0.05M pH7.8磷酸缓冲液。加入适量酶液后在4000lx荧光下照15min,并在560nm下测定光密度。以缓冲溶液做空白,单位是U/gFW。
POD活性测定:取上清酶液40μL,利用愈创木酚氧化法[18]测定酶活性,以每分钟在470nm处吸光度变化0.01为1个活力单位,结果以Ug-1FW表示。
CAT活性测定:参照王学奎[18]的方法,以每分钟在240nm处吸光度变化0.01为1个活力单位,,结果以Ug-1FW表示。
4、电导率测定:采用电导法[18],每个品种取三株,分别取其相同部位真叶,首先用清水、蒸馏水清洗干净后晾干,再用打孔器取直径8mm的圆片10个,放在用过的青霉素小瓶中,加蒸馏水10ml,用医用注射器抽出细胞间隙中的空气,再重新缓缓放入空气,水即被压入叶肉组织中而使叶片下沉,静置20min,用DDSJ-308型电导仪进行电导率测定。然后再放入100℃沸水中水浴15min,以杀死植物组织,取出放入自来水中冷却10 min 后,测其煮沸电导率。
5、MDA含量测定:称取剪碎的叶片1g,加入2ml10%三氯乙酸(TCA)和少量石英砂,研磨至匀浆,再加8ml三氯乙酸(TCA)进一步研磨。匀浆在4000r/min,离心10min,上清液为样品提取液。吸取离心的上清液2ml(注意:对照加2ml蒸馏水),加入2ml 0.67%硫代巴比妥酸(TBA)溶液,混匀物于沸水浴上反应15min,迅速冷却后再离心。取上清液测定532、600和450nm波长下吸光度。按公式①可直接求得样品提取液中MDA的浓度。根据植物组织的重量计算测定样品中MDA的含量[18]:MDA含量(μmol/g)=MDA浓度(μmol/L)提取液总体积(ml)/植物组织鲜重(g)
①MDA浓度(μmol/L)=6.45(D532-D600)-0.56D450 (D532、D600、D450分别代表450、532和600nm波长)
6、可溶性糖测定:采用蒽酮比色法[19],取干净新鲜叶片3份,每份0.2g,分别放入3支试管,加入5-10ml蒸馏水,塑料薄膜封口,于沸水提取30min,过滤到25ml容量瓶中,反复漂洗定容。然后取提取液0.5ml于试管中,加入1.5ml蒸馏水、0.5ml蒽酮乙酸乙酯、5ml浓硫酸,充分振荡,立即放入沸水浴中,准确保温1min,待自然冷却后,在630nm处测定其吸光度。空白对照是以蒸馏水代替提取液。
7、叶绿素含量测定:用打孔器在番茄幼苗功能叶片上打取圆片,用分光光度法测定叶绿素含量,以80%的丙酮为空白,用UV2100型分光光度计在波长663nm和646nm下测定吸光度,根据Amon方法[20]计算叶绿素含量。
8、自由水与束缚水含量测定:采用马林契克法[21],每个无性系取6个烘干称重的称量瓶,分成两组,分别用于测定组织含水量和自由水含水量。在选取的叶片两侧用0.5cm2左右的打孔器各打取150个叶圆片,分别放于测定组织含水量和自由水含水量的称量瓶称重后于105℃下杀青0.5h,80℃烘干至恒重,计算组织含水量。测自由水含量的称量瓶称重后加4ml的65%的蔗糖溶液,再次称重,然后置暗处放4-6h到预定时间后,用阿贝折射仪测定糖溶液浓度和原来已知糖液浓度。然后根据下式求组织中自由水和束缚水含量(%):
自由水含量(%)= B(B1-B2)
B2*Wf*100
束缚水含量=组织水含量-自由水含量
A:样品中自由水中重量
B:加入样品中蔗糖溶液的中重量
B1:原蔗糖溶液浓度百分数
B2: 加样后糖溶液的浓度百分数
Wf: 植物样品鲜重
9、可溶性蛋白含量测定:采用考马斯亮蓝染色法[18],取100μL酶液,加入2.9ml考马斯亮蓝溶液,反应2min后,在595nm处测定其吸光度。对照:全部考马斯亮蓝溶液。
10、过氧化氢(H2O2)含量测定:采用碘化钾分光光度法[22],取0.5ml酶液,加入2mlKI和0.5mlK2SO4,暗反应1h后,测定OD390,对照:0.1%TCA(三氯乙酸)为参比。
11、O2-产生速率测定:取0.5ml酶液,加入0.5mlPBS(0.05mol/L,PH7.8)和1ml盐酸羟胺,摇匀,25℃下保温1h后再加入1ml对氨基苯磺酸和1ml1-萘胺,混合涡旋,25℃保温30min后,3000r/min,离心3min。在530nm处测定吸光度[23]。对照:PBS代替酶液。
3.3.2 番茄材料耐低温的鉴定
对引进的番茄材料的耐低温能力进行鉴定,筛选出耐低温品种,并进一步对鉴定结果进行验证。
3.4可行性分析
本研究所选用的耐低温鉴定方法,不同研究者在不同作物中均有采用,因此研究方法是可行的。研究所在课题组从国内外引进150余份番茄材料,田间初步筛选耐低温能力差异显著,因此该研究在材料上也是可行的。加之相关性分析,主成分分析,聚类分析等方法,在小麦品种抗旱特性的综合评价[24,25]中已有应用,因此该研究是可行的。
4. 研究创新点
4.特色或创新之处
据报道鉴定番茄耐低温指标较多,但并非所有指标与番茄耐低温都显著相关。过多相关不强指标不但增加耐低温材料选择工作量,同时也影响选择的准确性,因而需要把与耐低温相关不强的指标去除,以得到简单适用的标准。本实验利用相关性分析,主成分分析,聚类分析,隶属函数法分析等方法筛选出番茄苗期较好的耐低温鉴定指标。
5. 研究计划与进展
5.研究计划及预期进展
(1)2012年5月-6月 查阅相关文献,确定试验方案和技术路线;
(2)2012年7月-8月 搜集实验资料,准备实验材料以及实验需要的各种化学药品等;
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